Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光

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产品优势

兼容荧光显微镜、流式细胞仪或荧光酶标仪

 

适用范围

用于细胞凋亡检测

 

产品介绍

Cell Meter™活细胞半胱天冬酶活性检测试剂盒采用荧光FMK半胱天冬酶抑制剂的检测原理。该抑制剂具有细胞膜通透性和非细胞毒性特性，进入细胞后可共价结合活性半胱天冬酶。

Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒专为通过检测活细胞中caspase 9的活化水平来监测细胞凋亡而设计，适用于定量分析凋亡细胞的caspase 9活性，或用于筛选caspase 9抑制剂。试剂盒中的绿色荧光标记物  FAM-LEHD-FMK可直接通过荧光显微镜、流式细胞仪或荧光酶标仪检测凋亡细胞中激活的caspase 9。本试剂盒提供所有必需组分及经过优化的检测方案。

 

适用仪器

分离细胞的检测方案

概述

1.用测试化合物制备细胞，密度为5×105至2×106个细胞/ mL

2.按 1:150 的比例向细胞溶液中加入FAM-LEHD-FMK

3.室温孵育1小时

4.离心收集细胞，洗涤后用缓冲液或生长培养基重悬

5.荧光强度检测（底部读数模式）：Ex/Em=490/525 nm（截止波长515 nm）

荧光显微镜：使用FITC滤光片

流式细胞仪：530/30 nm滤光片（FiTC通道）

注：使用前将所有部件在室温下解冻。

 

储备溶液配制

除非另有说明，所有未使用的储备液应分装成单次使用量，制备后储存在 - 20°C。避免反复冻融。

FAM-LEHD-FMK储备液（150X）：

向FAM-LEHD-FMK（组分 A）的小瓶中加入 50 µL 二甲基亚砜（DMSO），配制 150X FAM-LEHD-FMK储备液

 

有关细胞样品制备

请访问：https://www.aatbio.com/resources/guides/cell-sample-preparation.html

 

实验方案

1.根据特定的诱导方案培养细胞至适合凋亡诱导的密度，但不超过 2×10⁶个细胞 /mL。同时，对于每种标记条件，培养与诱导组密度相同的未诱导阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子：

1）用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2）用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3）用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4）用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意：应对每个细胞系进行单独评估，以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.按 1:150 的比例向细胞溶液中加入 150XFAM-LEHD-FMK储备液，将细胞置于 37°C、5% CO₂培养箱中孵育 1 小时。

注 a.用于FAM-LEHD-FMK标记的细胞可浓缩至约 5×10⁶个细胞 /mL。

    b.对于贴壁细胞，用 0.5 mM EDTA 轻轻吹打细胞以保持细胞完整，在与FAM-LEHD-FMK孵育前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

    c.合适的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度，需为每个实验优化孵育时间。

3.以约 200g 的离心力离心细胞 5 分钟，用 1 mL 洗涤缓冲液（组分 B）洗涤细胞两次，然后将细胞重悬于适量的洗涤缓冲液中。

注1：FAM-LEHD-FMK具有荧光，因此必须洗去所有未结合的试剂以消除背景干扰。对于悬浮细胞，应将细胞浓度调整为每块微量滴定板的每个孔中 2-5×10⁵个细胞 / 100 µL。

4.如果需要，可用DNA染色标记细胞（例如用 碘化丙啶标记死细胞，或用 Hoechst 标记全细胞群的细胞核）

5.通过荧光显微镜、流式细胞仪或荧光酶标仪监测荧光强度，使用荧光显微镜或荧光酶标仪检测时，需将100 µL细胞悬液加入96孔黑色微孔板的各孔中

特别注意： 对于悬浮细胞，应调整细胞浓度为每孔2-5×10⁵个细胞/100 µL