Cell Navigator F-肌动蛋白（F-Actin）标记试剂盒 红色荧光

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产品优势  

1.操作流程简便高效

2.能高亲和力特异性结合F-肌动蛋白

适用范围

适用于固定细胞F-肌动蛋白

产品介绍

Cell Navigator®荧光成像试剂盒是一套用于标记亚细胞结构的荧光成像工具，可特异性标记细胞膜、溶酶体、线粒体和细胞核等多种细胞器。通过对活细胞组分的特异性标记，该技术为研究细胞时空动态变化提供了强有力的手段。

本试剂盒专用于固定细胞中F-肌动蛋白的红色荧光标记，其核心成分为红色荧光标记的鬼笔环肽（phalloidin）偶联物。该偶联物能高亲和力地特异性结合F-肌动蛋白，是一种高效的F-肌动蛋白荧光探针。在纳摩尔浓度下，该鬼笔毒素即可实现对甲醛固定且透化处理的组织切片、细胞培养物或无细胞实验体系中F-肌动蛋白的高效标记、鉴定和定量分析。实验操作流程简便稳定。试剂盒提供经过优化的标准染色方案，并包含实验所需的所有关键组分，确保实验结果的可靠性和重复性。其优异的性能使其成为细胞骨架研究的理想选择。

实验方案概览

概述

1.样本准备（微孔板）

2.吸弃孔板内液体

3.每孔加入100 µL iFluor™ 594-鬼笔环肽工作液

4.室温染色15-60分钟

5.洗涤细胞

6.显微镜观察（激发/发射=583/603 nm）

重要提示

所有组分需平衡至室温后再开封使用

工作液配制

取10 µL iFluor™ 594-鬼笔环肽（组分A）加入10 mL标记缓冲液（组分B）混匀

注：不同细胞类型染色效果可能存在差异，需相应调整工作液浓度。全程避光操作。

细胞样本制备指南详见：
https://www.aatbio.com/resources/guides/cell-sample-preparation.html

标准实验步骤

1.用3.0%-4.0%甲醛PBS溶液室温固定细胞10-30分钟

注：避免使用含甲醇固定剂（甲醇会破坏肌动蛋白结构），推荐无甲醇甲醛试剂

2.用PBS冲洗固定后细胞2-3次

3.（可选）加入0.1% Triton X-100 PBS溶液处理3-5分钟，PBS洗涤2-3次

4.每孔（96孔板）加入100 µL 1× iFluor™ 594-鬼笔环肽工作液，室温避光染色15-60分钟

5.用PBS轻柔洗涤2-3次去除多余染料

6.使用Texas Red通道进行荧光成像

试剂应用文献