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活细胞染色 CytoTell 绿色

英文名称:CytoTell™ Green
产品参数
Ex (nm)510Em (nm)525
分子量419.24溶剂DMSO
存储条件在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

产品货期

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适用范围

用于活细胞分析

 

产品介绍

流式细胞术结合荧光染色是分析异质性细胞群体的强大工具。在现有荧光染料中,CFSE 是首选的细胞增殖指示剂,用于活细胞分析。然而,使用 CFSE 监测细胞增殖存在一些缺陷:1)细胞毒性强——CFSE会非选择性结合所有氨基基团,从而改变关键胞内蛋白功能(如细胞膜GPCRs);2)响应迟缓且操作不便——第二代细胞的荧光强度较第一代降低10倍以上,需等待至少一个增殖周期才能开始分析;3)需去除培养基——因CFSE会与培养基组分反应,检测前必须更换培养体系。

CytoTell™ Green的研发成功突破了这些技术局限。相较于CFSE,该染料具有显著优势:

1)细胞毒性低——其分子设计可最大限度减少与多药耐药蛋白(MDR)的相互作用,避免被泵出细胞,从而实现优异胞内滞留;

2)检测响应更快——第一代与第二代细胞间无荧光强度断层,细胞分裂时染料均等分配至子代细胞,可通过荧光强度的连续半减现象追踪增殖动态;

3)操作流程更简捷——染料不与培养基成分反应,无需更换培养基即可直接使用;

4)检测灵敏度更高——可清晰解析多达9代细胞增殖轨迹;

5)稳定性显著提升——原液可在室温保存数日,适用于长期细胞追踪实验。

采用双参数散点图分析可进一步提升各代细胞(尤其是未分裂细胞与第一代细胞)的分辨率。经CytoTell™ Green标记的细胞可采用标准甲醛固定剂和皂苷透化缓冲液进行固定透化,用于细胞内靶标分析。该染料最大激发波长为510 nm,可由蓝激光(488 nm)激发,兼容FITC滤光片系统。

 

适用仪器


流式细胞仪  
Ex: 488 nm
Em: 530/30  nm 
通道: FITC 通道

 

实验方案

样品实验方案

简要概述

1.用测试化合物准备细胞

2.加入1X染料工作液

3.在室温或37 o C 下将染料与细胞共孵育10至30分钟

4.去除染料工作液

5.使用流式细胞仪和适当的过滤器进行分析

重要说明

实验开始前,将试剂盒所有组分置于室温。

注:CytoTell™染料为冻干粉末。若在 - 20°C 下避光储存且避免反复冻融,其稳定性至少可达 6 个月。

 

 

溶液配制

储备溶液配制

除非另有说明,所有未使用的储备液应分装为单次使用量,制备后保存于-20°C,避免反复冻融

CytoTell 染料储备液(500X):

向染料粉末瓶中加入500 µL DMSO,涡旋振荡混匀制备储备液(500X)

注意:储备液需现配现用;剩余溶液应分装后于<-20°C冷冻保存。避免反复冻融并避光

 

工作溶液配制

CytoTell 染料工作溶液(1X)

使用前将500X DMSO储备液按1:500比例用HHBS缓冲液(Hanks平衡盐溶液含20 mM Hepes)或自选pH 7缓冲液稀释(如:1 µL 500X储备液加入500 µL缓冲液),涡旋振荡混匀

注意:工作液终浓度需根据不同细胞类型和/或实验条件进行优化,建议测试至少跨越十倍浓度的梯度范围。例如CytoTell™ Red在某些细胞类型中的使用量可能远低于推荐浓度

 

实验操作流程

1.用测试化合物处理细胞所需的时间。

2.离心细胞以获得每管1-5×10 5个细胞。

3.在500 µL CytoTell 染料工作溶液中重悬细胞。

可选:可不移除培养基直接向细胞中加入500X DMSO储备液(如:向500 µL细胞悬液中加入1 µL 500X储备液)

4.室温或37°C将细胞与染料溶液孵育10至30分钟,避光。

5.从细胞中除去染料工作溶液,用HHBS或您选择的缓冲液洗涤细胞。将细胞重悬于500 µL预热的HHBS或培养基中,每管可得到1-5×10 5个细胞。

6.用流式细胞仪或荧光显微镜在相应激发/发射波长下监测荧光变化

 

试剂应用文献

The CH1 domain influences the expression and antigen sensing of the HIV-specific CH31 IgM-BCR and IgG-BCR
Authors: Ortiz, Yaneth and Anasti, Kara and Pane, Advaiti K and Cronin, Kenneth and Alam, S Munir and Reth, Michael
Journal: Proceedings of the National Academy of Sciences (2024): e2404728121
 
A co-culture system of macrophages with breast cancer tumoroids to study cell interactions and therapeutic responses
Authors: Raffo-Romero, Antonella and Ziane-Chaouche, Lydia and Salom{\'e}-Desnoulez, Sophie and Hajjaji, Nawale and Fournier, Isabelle and Salzet, Michel and Duhamel, Marie
Journal: Cell Reports Methods (2024)
 
Optimizing lentiviral vector formulation conditions for efficient ex vivo transduction of primary human T cells in chimeric antigen receptor T-cell manufacturing
Authors: Luostarinen, Annu and Kailaanm{\"a}ki, Anssi and Turkki, Vesa and K{\"o}ylij{\"a}rvi, Marjut and K{\"a}yhty, Piia and Leinonen, Hanna and Albers-Skirdenko, Vita and Lipponen, Eevi and Yl{\"a}-Herttuala, Seppo and Kaartinen, Tanja and others,
Journal: Cytotherapy (2024)