ThiolTrace Violet 500*谷胱甘肽检测试剂*
| Ex (nm) | 415 | Em (nm) | 499 |
| 分子量 | 557.01 | 溶剂 | DMSO |
| 存储条件 | 在零下15度以下保存, 避免光照 |
产品货期
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适用范围
谷胱甘肽检测
产品介绍
亚细胞水平上谷胱甘肽(GSH)的检测与定位对于理解氧化还原状态的调节、药物作用机制及解毒过程具有重要意义。ThiolTrace™ Violet 500是一种比常用探针mBBr、mBCl或Thiotracker™ Violet更明亮、更稳定的细胞内硫醇检测工具,可用于监测细胞内GSH水平。由于还原型谷胱甘肽占据细胞内大部分游离硫醇,该探针能有效评估细胞中还原型谷胱甘肽的含量。其亮度较mBCL及其他常用硫醇检测探针(如Thiotracker Violet)提升至少10倍,支持紫外或405 nm激发光源,并具有较大的斯托克斯位移。该产品兼容醛类固定剂和0.5% Triton® X-100透化处理,适用于多重检测分析(包括细胞毒性研究),为生物样本中还原型GSH的检测提供了一种简便、灵敏且重现性良好的方法。
ThiolTrace Violet 500与硫醇结合后,在405 nm紫激光激发下可发射520-530 nm的强荧光。与ThiolTracker Violet(Thermo Fisher Scientific)相比,在含生长因子的细胞培养基中,ThiolTrace Violet 500的荧光强度高出10-100倍,且能兼容多种稀释液(包括含血清细胞培养基)。该探针可广泛应用于流式细胞术、HCS成像及荧光显微镜检测领域
客户使用该产品检测并可视化细胞内谷胱甘肽(GSH)的水平变化,以验证CuDL@CM对GSH的消耗作用。具体来说,Thiol Tracker Violet通过荧光信号反映GSH的含量,其染色结果显示在Figure 4E和Figure 4F中:
①Figure 4E展示了不同处理组(如Cu²⁺、DQ、β-Lap、CuDL、CuDL@CM)的共聚焦激光扫描显微镜(CLSM)图像,显示CuDL@CM组绿色荧光显著减弱,表明GSH被有效消耗。
②Figure 4F则显示了CuDL@CM在不同时间点处理后细胞内GSH水平的变化,进一步支持其剂量依赖性GSH耗竭效果。

文献发表在《ADVANCED HEALTHCARE MATERIALS》
文献名称:Carrier-Free Self-Assembled Nanoparticles for Triple-Amplified Tumor Chemodynamic Therapy and Cuproptosis Induction。
适用仪器
| 流式细胞仪 | |
| Ex: | 405 nm |
| Em: | 525/50 nm |
| 通道: | Pacific Orange 通道 |
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荧光显微镜 |
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| Ex: | 405 nm |
| Em: | 525 nm |
| 推荐孔板: | 黑色透明底板 |
| 通道: | TRITC 通道 |
样品实验方案
简要概述
1.用5×10 5到1×10 6细胞/ mL 的密度制备含测试化合物的细胞
2.准备ThiolTrace Violet 500工作溶液并将其添加到细胞中
3.在37 o C 孵育20至30分钟
4.在Ex / Em = 405/525 nm处读取荧光强度-Pacific Orange
溶液配制
1.储备溶液配制
所有未使用的储备溶液应分为一次性使用的等分试样,并在制备后储存在-20°C下。 避免重复冻融。
ThiolTrace 紫罗兰色500储备液(500X):
在小瓶ThiolTrace Violet 500中加入200 µL DMSO(未提供),并充分混合。 注意:分装并在-20℃下存储未使用的ThiolTrace Violet 500储备液。 避免反复冻融。
2.工作溶液配制
ThiolTrace Violet 500工作溶液(1X):
将1 µL ThiolTraceTM紫罗兰色500储备溶液加入您选择的0.5 mL缓冲液中,并充分混合。
注意:可以在不含有血清的细胞培养基中制备ThiolTrace Violet 500工作溶液。
操作步骤
1.用测试化合物处理细胞所需的时间。注意:对于贴壁细胞,用0.5 mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用ThiolTrace 紫罗兰色工作溶液孵育之前,用含血清的培养基洗涤细胞一次。注意:适当的孵育时间取决于所用的单个细胞类型和细胞浓度。优化每个实验的孵育时间。
2.将细胞以1000 rpm的速度离心4分钟,然后用1 mL所选缓冲液(可选)洗涤细胞。
3.将细胞重悬于0.5 mL ThiolTraceTM Violet 500工作溶液中,并在37oC培养箱中孵育20至30分钟。
注意:对于荧光显微镜,每孔添加200 µL ThiolTraceTM Violet 500工作溶液。
4.以1000 rpm离心细胞4分钟,然后在1 mL所选缓冲液(可选)中洗涤细胞。
5.重悬于缓冲液中,使用太平洋橙滤光片组(Ex / Em = 405/525 nm),用流式细胞仪监测荧光强度。
试剂应用文献





