ReadiLink 蛋白质生物素偶联试剂盒
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产品优势
便捷性:提供完整的标记组分,操作流程简单高效
适用范围
主要用于标记抗体
产品介绍
生物素(Biotin)被广泛应用于生物分子标记,尤其是抗体标记领域。我们的ReadiLink™蛋白生物素化试剂盒经过专门优化,可用于酶免疫分析(EIA)所需的生物素标记IgG抗体制备。该试剂盒采用琥珀酰亚胺酯化生物素(biotin succinimidyl ester)作为标记物,可与IgG及其他生物分子表面的氨基基团发生高效反应。
本试剂盒包含标记和纯化所需的全套试剂。根据我们的实验数据,每个IgG分子可偶联3-6个生物素分子(具体数量取决于IgG分子量及表面可及赖氨酸残基数量)。每盒可完成2次标记反应,每次反应最多可标记1mg蛋白。整个标记流程仅需不到1小时即可完成
样品实验方案
简要概述
将20μl反应缓冲液(组分B)加入目标蛋白(200μl)中
将蛋白质溶液添加到ReadiLink Biotin SE(组分A)中
在室温下孵育30-60分钟
通过旋转柱纯化缀合物
注意:ReadiLink™ 生物素琥珀酰亚胺酯(组分 A):-20°C 避湿保存(开封后建议分装)
反应缓冲液(组分 B) 和 离心柱(组分 C):室温保存,切勿冷冻
开封前请预热所有组分,并在开始偶联前立即配制所需溶液。由于本标准操作规程 (SOP) 是为山羊抗兔 IgG 标记而制定的,您可能需要进一步优化您的蛋白标记方法。
工作溶液配制
蛋白质工作溶液配制方案:
为了标记1mg靶蛋白(假设目标蛋白浓度为5mg / mL),将20μ的反应缓冲液(组分B,总反应体积的10%)与200μL目标蛋白溶液混合。
注意:如果您的蛋白质浓度不同,请相应调整蛋白质体积,使~1 mg蛋白质参与标记反应。
注意:蛋白质溶液的pH值应为8.5±0.5。若pH低于8.0,则使用反应缓冲液(组分B)或饱和碳酸氢钠溶液将pH调节至8.0-9.0的范围。
注意:蛋白质应溶解于pH7.2-7.4的1X磷酸盐缓冲盐水(PBS)中。如果蛋白质溶解在Tris或甘氨酸缓冲液中,则必须用pH7.2-7.4的1X PBS透析,以除去广泛用于蛋白质沉淀的游离胺或铵盐(例如硫酸铵和乙酸铵)。
注意:用牛血清白蛋白(BSA)或明胶稳定的不纯抗体或抗体可能效果不佳。叠氮化钠或硫柳汞的存在也可能干扰缀合反应。可以通过透析或旋转柱除去叠氮化钠或硫柳汞,以获得最佳标记结果。
注意:如果蛋白质浓度低于2 mg / mL,则结合效率会显着降低。推荐将最终蛋白浓度控制在2-10 mg/mL范围内以获得理想标记效率。
操作步骤
1偶联反应
1.1将蛋白质工作溶液加入到ReadiLink 生物素SE(组分A)的小瓶中,通过反复移液几次将其充分混合,或者将小瓶涡旋几秒钟。
1.2将缀合反应混合物在室温下保持30-60分钟。
注意:如果需要,可以旋转或摇动缀合反应混合物更长的时间。
2.离心柱预处理
2.1将提供的离心柱(组分C)反转几次以重新悬浮沉降的凝胶并除去任何气泡。
2.2取下柱尖后置于洗涤管(2 mL,未提供,需自备)中。取下柱盖,让多余的填料缓冲液通过重力排放到凝胶床的顶部。如果色谱柱没有开始流动,请将盖子推回色谱柱并再次将其取出以开始流动。丢弃排出的缓冲液,然后将色谱柱放回洗涤管中。但是,如果将色谱柱放入12 x 75 mm试管(未提供,需自备)中,请立即离心。
2.3在摇动式离心机中以1,000×g离心1分钟(参见“离心注释”部分)以除去包装缓冲液。
2.4向柱中加入1-2 mL 1X PBS(pH 7.2-7.4)。每次施用PBS后,让缓冲液通过重力排出,或将柱离心2分钟以除去缓冲液。丢弃收集管中的缓冲液。重复此过程3-4次。
2.5在摇动式离心机中以1,000×g离心2分钟(参见“离心注意事项”部分)以除去包装缓冲液。
3.纯化偶联物
将预处理后的离心柱置于洁净收集管(1.5 mL,未提供,需自备)中,小心将100-500 µL偶联反应液加至柱床中央。追加300 µL PBS使总体积达220-520 µL,以1,000×g离心5-6分钟,收集含生物素标记蛋白的滤出液。
4.蛋白质偶联物的储存
建议标记抗体浓度≥0.5 mg/mL并添加保护蛋白(如0.1%牛血清白蛋白)。含2 mM叠氮钠的避光溶液可4℃保存两个月;长期保存需冻干或分装为单次用量后存于≤-60℃
5.离心注意事项
离心柱(组分C)可适配2 mL微量离心管或12×75 mm试管。水平转子离心机需能产生≥1,000×g离心力(注:离心力RCF=1.12×10-5×转速2×转子半径,其中半径指从转子中心到离心柱中部的距离,单位厘米)。具体转速请参照离心机说明书进行换算
数据分析
图1. ReadiLink 蛋白质生物素化试剂盒的化学结构